对实验动物的******是动物实验中至关重要的一环。
所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的******剂、止痛剂和镇静剂。如******剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用******剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
使用******剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
① 吸入******：
将乙醚氯仿等挥发性性******药由动物呼吸道吸入体内而产生******效果。吸入******通常适合于******时间较短的动物实验或用做基础******或注射******的辅助******。
② 注射******：
使用非挥发性全身******药进行******。注射******方法简便，******时间较长，适合于长时间******的动物实验。一般采用静脉注射、腹腔注射、肌肉注射等方法进行******。兔、猪、犬等大动物常采用静脉注射、肌肉注射的方法进行******；小鼠、大鼠、豚鼠等小动物采用腹腔注射的方法。注射******后，动物即倒下，全身无力，反应消失，表明已达到适宜的******效果，是进行手术的最佳时期。若动物四肢开始抖动，表明接近苏醒。若实验过程中，动物发生抽搐等症状，说明******过量，可能是死亡的前兆，需立刻进行急救处理。
③ 气管内插管******：
是将一特制的导管置入动物的气管内，建立一人工的通气管，通过这一气管内导管进行******的方法。此******方法的优点在于无论任何手术部位，都可使动物保持呼吸道通畅；可防止异物进入呼吸道，也便于清除呼吸管内的分泌物；便于给氧吸入和辅助呼吸。
局部******虽然在动物实验中用途不是很广泛，但猫、犬等大动物在短时间的实验中可能会使用局部******的方法。局部******可保持清醒状态，对重要器官功能干扰轻微，******并发症少，是一种比较安全的******方法。
局部******药物可划分为酯类和酰胺类两种：
✔ 酯类局部******药有*********、普鲁卡因、丁卡因和氯普鲁卡因；
✔ 酰胺类局部******药有利多卡因、布比卡因、卡博卡因等。
常用的方法是表面******、浸润******、区域阻滞******等。
① 表面******：将穿透力强的局部******药直接作用于黏膜表面，使黏膜下神经末梢******。可将药物配成不同浓度的溶液、凝胶和糊剂，通过滴入、喷雾、涂布和灌注等方法将其应用到眼、空腔、鼻腔、喉、外耳道等黏膜处，产生******。
② 浸润******和区域阻滞******：沿手术切口线逐层注射局部******药或手术区周围部位注射药物。阻滞神经纤维而达到******作用，前者称为浸润******，后者称为区域******。适合于犬、猫皮肤撕裂缝合、及皮肤肿瘤的切除和皮肤活组织的采集等。
① ******监测
******过程中，若使用静脉注射的方法，注射速度必须缓慢，同时需时刻观察肌肉紧张度、角膜反射和动物对皮肤疼痛的反应。当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。动物在******期体温容易下降，要采取保温措施，尤其在冬天更应注意观察体温变化，可在动物肛门插入温度计（正常的肛门温度参考值：大小鼠37.5℃，家兔39.5℃，豚鼠和家兔39.5℃等）。
② ******以外的抢救措施
当实验进行中因******过量、大失血、过强的创伤、窒息等各种原因，而使动物血压急剧下降，甚至测不到；呼吸极慢而且不规则，甚至发生呼吸停止、角膜反射消失等临床死亡症状时，应立即进行急救。急救的方法可根据动物情况而定。
常用的急救措施有以下几种：
✔ 注射强心药：可静脉注射0.1%肾上腺素1ml，必要时直接作心脏内注射。如动物注射肾上腺素后，心脏虽已搏动但极为无力时，可静脉或心脏内折射1%氯化钙5ml。
✔ 注射呼吸中枢兴奋药：可静脉注射山梗茶碱或尼可刹米（25%尼可刹米1ml；1%山梗茶碱0.5ml）。
✔ 快速注射高深葡萄糖液：一般常采用经动物股动脉逆血流加压、快速、冲击式的注入40%的葡萄糖溶液。注射量可按2-3ml/kg体重计算。
✔ 动物快速输血、输液：做失血性休克或死亡复活等实验。
✔ 人工呼吸：可采用双手压迫动物胸廓进行人工呼吸。
